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Publiziert am 19.04.2023
Bei an Pneumonie Erkrankten sollten neben den häufigen Erregern auch zoonotische Chlamydien in Betracht gezogen werden, vor allem bei Personen mit direktem Kontakt zu Wirtstieren. Eine Übersicht zum aktuellen Wissensstand zu den oft unterschätzten zoonotischen Chlamydien.
Tabelle 1: Chlamydienspezies mit nachgewiesenem zoonotischen Potentiala | |||||
Spezies | Hauptwirte und (Nebenwirte) | Klinische Manifestion Hauptwirte | Übertragung auf den Menschen | Klinische Manifestation Mensch | Untersuchungsmaterial Menschb |
Chlamydia psittacic | Vögel (Pferd) | Konjunktivitis, (atypische) Pneumonie, Enteritis, Hepatitis Abort, Pneumonie | Inhalation | Von grippeähnlichen Symptomen bis zu schweren systemischen Erkrankungen, atypische Pneumonie | BAL |
Chlamydia abortusc | Schaf, Ziege (Rind, Schwein, Pferd) | Abort, Totgeburt, lebensschwache Jungtiere | Inhalation, Ingestion | Abort, atypische Pneumonie | BAL,Abortmaterial |
Chlamydia caviae | Meerschweinchen (Pferd) | Konjunktivitis, Keratitis, Pneumonie | Direkter Kontakt | Konjunktivitis, atypische Pneumonie | BAL |
Chlamydia felis | Katze | Konjunktivitis, Rhinitis | Direkter Kontakt | (Kerato-)Konjunktivitis | KT |
a Auflistung absteigend nach zoonotischer Bedeutung; adaptiert nach [1]. b BAL: bronchoalveoläre Lavage; KT: Konjunktivaltupfer c In der Schweiz anzeigepflichtige Tierseuchen gemäss Tierseuchenverordnung (https://www.fedlex.admin.ch/eli/cc/1995/3716_3716_3716/de). Die anerkannten veterinärmedizinischen Laboratorien müssen positive Befunde den Kantonalen Veterinärämtern melden, die wiederum das Bundesamt für Veterinärwesen und Lebensmittelsicherheit (BLV) informieren. |
Tabelle 2: Ausgewählte real-time PCR-Methoden zum Nachweis von zoonotischen Chlamydienspezies | ||||||
Referenzen | Target | Detektierte Chlamydienspezies | Testspezifikationen | |||
C. psittaci | C. abortus | C. caviae | C. felis | |||
[16] | ompA1 | x | x | x | x | 4 spezifische Singleplex-PCRs C. psittaci: keine Detektion von Genotyp M56 |
[17] | CPSIT_RS035052 | x | Detektion aller Genotypen | |||
[18] | PCR 1 = 16S-23S rRNA operon PCR 2= CPSIT_06072 | x | x | Duplex PCR: PCR 1 detektiert C. psittaci und C. abortusohne deren Differenzierung; PCR 2 detektiert C. psittaci. Keine Detektion von C.-psittaci-Genotypen M56 und teilweise E/B. Die Interpretation «C. abortus positiv» bei negativem Ergebnis in PCR 2 erfolgt aufgrund von Wirtsspezifität und Gewebetropismus. | ||
[5] | rpoB3 | x | x | x | Identifikation mittels Amplifikation eines rpoB-Fragments und anschliessende Speziesdifferenzierung durch Schmelzkurvenanalyse | |
1 outer membrane protein A; 2 C.-psittaci-spezifisches Gen unbekannter Funktion; 3 β-Untereinheit der RNA-Polymerase. |
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