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Publié le 19.04.2023
Chez les personnes atteintes de pneumonie, il convient de prendre en compte non seulement les agents pathogènes fréquents, mais aussi les chlamydias zoonotiques, en particulier chez les personnes en contact direct avec des animaux hôtes. Un aperçu de l'état actuel des connaissances sur les chlamydies zoonotiques, souvent sous-estimées.
Tableau 1: Espèces de chlamydies au potentiel zoonotique avéréa | |||||
Espèce | Hôtes principaux et (hôtes secondaires) | Manifestation clinique chez les hôtes principaux | Transmission à l‘homme | Manifestation clinique chez l‘homme | Matériel analysé chez l’hommeb |
Chlamydia psittacic | Oiseaux (Cheval) | Conjonctivite, pneumonie (atypique), entérite, hépatite Avortement, pneumonie | Inhalation | De symptômes pseudo-grippaux à des maladies systémiques graves, pneumonie atypique | LBA |
Chlamydia abortusc | Brebis, chèvre, (bœuf, porc, cheval) | Avortement, animaux mort-nés, animaux faibles à la naissance | Inhalation, ingestion | Avortement, pneumonie atypique | LBA,matières abortives |
Chlamydia caviae | Cochon d‘Inde, (cheval) | Conjonctivite, kératite, pneumonie | Contact direct | Conjonctivite, pneumonie atypique | LBA |
Chlamydia felis | Chat | Conjonctivite, rhinite | Contact direct | (Kérato-)conjonctivite | Écouvillon conjonctival |
a Liste par ordre décroissant d’importance zoonotique; adapté d’après [1]. b LBA: lavage bronchoalvéolaire c Épizooties à déclaration obligatoire en Suisse selon l’Ordonnance sur les épizooties (https://www.fedlex.admin.ch/eli/cc/1995/3716_3716_3716/fr). Les laboratoires vétérinaires reconnus doivent déclarer les résultats positifs aux offices vétérinaires cantonaux, qui informent à leur tour l’Office fédéral de la sécurité alimentaire et des affaires vétérinaires (OSAV). |
Tableau 2: Sélection de méthodes de PCR en temps réel pour la mise en évidence d’espèces de chlamydies zoonotiques | ||||||
Référence | Cible | Espèces de chlamydies détectées | Spécifications de test | |||
C. psittaci | C. abortus | C. caviae | C. felis | |||
[16] | ompA1 | x | x | x | x | 4 PCR singleplex spécifiques C. psittaci: pas de détection du génotype M56 |
[17] | CPSIT_RS035052 | x | Détection de tous les génotypes | |||
[18] | PCR 1 = 16S-23S Opérons d’ARNr PCR 2= CPSIT_06072 | x | x | PCR duplex: la PCR 1 détecte C. psittaci et C. abortus sans les différencier; la PCR 2 détecte C. psittaci. Pas de détection des génotypes M56 et en partie E/B de C. psittaci. L’interprétation «C. abortus positif» en cas de résultat négatif à la PCR 2 est basée sur la spécificité de l‘hôte et le tropisme tissulaire. | ||
[5] | rpoB3 | x | x | x | Identification par amplification d’un fragment rpoB puis différenciation des espèces par analyse de la courbe de fusion | |
1 outer membrane protein A 2 Gène spécifique de C. psittaci de fonction inconnue 3 Sous-unité ẞ de l’ARN polymérase |
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